PRINCIPE La détermination de l'activité anticholinestérasique des extraits benzéniques du vin ou du jus de raisin est exécutée après oxydation préalable à l'eau de brome par la méthode électrométrique de Michel. La technique consiste à mesurer l'abaissement de pH produit par la libération d'acide acétique. MATERIEL Tubes à essai, diamètre extérieur 2 cm, hauteur 11 cm. pH mètre (de préférence à bande étalée). Commutateur multiple à main pour mesures alternées de pH. Quatre électrodes de verre combinées. Bain-marie avec thermostat à 25° C. REACTIFS NECESSAIRES
- a)Eau de brome : diluez extemporanément 0,2 ml d'eau de brome saturée dans 50 ml d'eau distillée.
- b)Tampon de Michel : Barbital sodique ... 1,237 g. Phosphate monopotassique ... 0,136 g. Chlorure de sodium ... 17,535 g. Eau distillée ... 900 ml. Ajustez à pH 8 avec 11,6 ml d'HCl 0,1 N et complétez à 1000 ml avec de l'eau distillée.
- c)Sérum de poulain filtré sans antibiotique. Ampoule de 10 ml. Institut Pasteur. Sérum de poulain ... 1 ml. Tampon de Michel ... 9 ml. Eau distillée ... 11 ml.
- e)Solution de chlorhydrate d'acétylcholine : solution extemporanée à 1 p 100 (0,25 g dans 25 ml d'eau distillée).
- f)Solution aqueuse de glycérine à 10 p. 100. MODE OPERATOIRE Extraction Suivre la technique indiquée dans la méthode colorimétrique (3 A). DOSAGE POTENTIOMETRIQUE Prenez quatre tubes de 25 ml environ pouvant recevoir chacun une électrode combinée (calomel - verre), introduisez dans les numéros 2, 3 et 4 les volumes désirés d'extrait à analyser représentant 1 et (
- ou)2 g d'échantillons, ajoutez 0,1 ml de solution f, évaporez presque à sec ces extraits à basse température et introduisez successivement dans tous les tubes les divers réactifs indiqués sur le tableau suivant : :================================: : : To : : : Témoin zéro : : :-------------: : Eau de brome : : : diluée .. : 0,2 ml : : : : :================================: :================================: : : 1 : : : Extrait : : :-------------: : Eau de brome : : : diluée .. : 0,2 ml : : : : :================================: :================================: : : 2 : : : Extrait : : :-------------: : Eau de brome : : : diluée .. : 0,2 ml : : : : :================================: :================================: : : 3 : : : Extrait : : :-------------: : Eau de brome : : : diluée .. : 0,2 ml : : : : :================================: Repos trois minutes. :================================: : : To : : : Témoin zéro : : :-------------: : Solution : : : tampon .. : 2 ml : : : : :================================: :================================: : : 1 : : : Extrait : : :-------------: : Solution : : : tampon .. : 2 ml : : : : :================================: :================================: : : 2 : : : Extrait : : :-------------: : Solution : : : tampon .. : 2 ml : : : : :================================: :================================: : : 3 : : : Extrait : : :-------------: : Solution : : : tampon .. : 2 ml : : : : :================================: Agitez. :================================: : : To : : : Témoin zéro : : :-------------: : Sérum : : : tamponné .. : 2 ml : : : : :================================: :================================: : : 1 : : : Extrait : : :-------------: : Sérum : : : tamponné .. : 2 ml : : : : :================================: :================================: : : 2 : : : Extrait : : :-------------: : Sérum : : : tamponné .. : 2 ml : : : : :================================: :================================: : : 3 : : : Extrait : : :-------------: : Sérum : : : tamponné .. : 2 ml : : : : :================================: Agitez et disposez au bain-marie à 25° les quatre tubes dans lesquels sont plongés les électrodes combinées. Après trois minutes, vérifiez que le pH est voisin de 8. Laissez incuber trente minutes à 25° (sans retirer les électrodes). :================================: : : To : : : Témoin zéro : : :-------------: : Prenez le pH : : : après ces trente : : : minutes .. : pHOto : : Ajoutez 1 ml : : : de solution : : : d'acétylcholine : 1 ml : : : : :================================: :================================: : : 1 : : : Extrait : : :-------------: : Prenez le pH : : : après ces trente : : : minutes .. : pH01 : : Ajoutez 1 ml : : : de solution : : : d'acétylcholine : 1 ml : : : : :================================: :================================: : : 2 : : : Extrait : : :-------------: : Prenez le pH : : : après ces trente : : : minutes .. : pH02 : : Ajoutez 1 ml : : : de solution : : : d'acétylcholine : 1 ml : : : : :================================: :================================: : : 3 : : : Extrait : : :-------------: : Prenez le pH : : : après ces trente : : : minutes .. : pH03 : : Ajoutez 1 ml : : : de solution : : : d'acétylcholine : 1 ml : : : : :================================: Laissez hydrolyser trente minutes à 25° C (sans retirer les électrodes). :================================: : : To : : : Témoin zéro : : :-------------: : Prenez le pH : : : après ces trente : : : minutes .. : pHfto : : : : :================================: :================================: : : 1 : : : Extrait : : :-------------: : Prenez le pH : : : après ces trente : : : minutes .. : pHf1 : : : : :================================: :================================: : : 2 : : : Extrait : : :-------------: : Prenez le pH : : : après ces trente : : : minutes .. : pHf2 : :================================: :================================: : : 3 : : : Extrait : : :-------------: : Prenez le pH : : : après ces trente : : : minutes .. : pHf3 : :================================: :================================: : : To : : : Témoin zéro : : :------------------: : Abaissement : DTo = : : du pH .. : (pH0to - pHfto) : : : : :================================: :================================: : : 1 : : : Extrait : : :------------------: : Abaissement : D1 = : : du pH .. : (pH01 - pHf1) : : : : :================================: :================================: : : 2 : : : Extrait : : :------------------: : Abaissement : D2 = : : du pH .. : (pH02 - pHf2) : : : : :================================: :================================: : : 3 : : : Extrait : : :------------------: : Abaissement : D3 = : : du pH .. : (pH03 - pHf3) : : : : :================================: :================================: : : To : : : Témoin zéro : : :-------------: : Pourcentage : : : d'inhibition .. : 0 p. 100 : : : : :================================: :================================: : : 1 : : : Extrait : : :-----------------: : Pourcentage : DT0 - D1 : : d'inhibition : -------- : : : 0,01xDT0 : : : : :================================: :================================: : : 2 : : : Extrait : : :-----------------: : Pourcentage : DT0 - D2 : : d'inhibition : -------- : : : 0,01xDT0 : : : : :================================: :================================: : : 3 : : : Extrait : : :-----------------: : Pourcentage : DT0 - D3 : : d'inhibition : -------- : : : 0,01xDT0 : : : : :================================: NOTA - En raison de l'activité variable et inconnue des échantillons de sérum utilisés, il est conseillé de vérifier cette activité avant l'analyse des extraits. A cet effet, une mesure témoin sera effectuée au préalable, le sérum ne devant être considéré comme valable que si la valeur de l'abaissement du pH est supérieure à 0,8 unité de pH. RESULTATS La sensibilité de cette technique est supérieure à celle de la méthode colorimétrique. En raison des variations d'activité des produits techniques étalons, les doses inhibitrices suivantes pour le malathion et le parathion sont données à titre indicatif seulement. 1° Inhibition nulle ou inférieure à 5 p. 100. Les résultats obtenus indiquent que les prises d'essai renferment généralement moins de 0,05 micron de gramme d'insecticide organo-phosphoré. Nous avons noté par exemple qu'une inhibition de 5 p. 100 était obtenue avec : 0,03 micron de gramme de malathion. 0,01 micron de gramme de parathion produisent une inhibition de 10 p. 100. 2° Inhibition de 50 p. 100. L'inhibition de 50 p. 100 est obtenue respectivement avec : 0,16 micron de gramme de malathion et 0,08 micron de gramme de parathion. 3° Inhibition égale ou supérieure à 90 p. 100. Cette inhibition est constatée respectivement pour : 0,59 micron de gramme de malathion et 0,60 micron de gramme de parathion. La définition de la dose réelle demande toujours une identification parallèle du produit actif. NOTA - Technique sans oxydation préalable à l'eau de brome. La suppression de l'étape d'oxydation à l'eau de brome rend la technique beaucoup moins sensible. A titre d'exemple, pour le parathion et le malathion, les sensibilités sont réduites aux valeurs suivantes : 1° L'inhibition voisine de 5 p. 100 est donnée par : 80 microns de grammes de malathion ou 0,85 micron de gramme de parathion. 2° L'inhibition de 50 p. 100 est donnée par : 400 microns de grammes de malathion ou 8 microns de grammes de parathion. 3° L'inhibition égale ou supérieure à 90 p. 100 est donnée par : 1,400 microns de grammes de malathion ou 45 microns de grammes de parathion.