LEGIARTI000031121548 LEGI article/LEGI/ARTI/00/00/31/12/15/LEGIARTI000031121548.xml Article Annexe IV MODIFIE 2015-08-29 2018-11-14 AUTONOME Arrêté du 25 janvier 2010 établissant le programme de surveillance de l'état des eaux en application de l'article R. 212-22 du code de l'environnement Arrêté du 25 janvier 2010 établissant le programme de surveillance de l'état des eaux en application de l'article R. 212-22 du code de l'environnement Annexes PRÉCONISATIONS POUR LES MÉTHODES À UTILISER POUR LE CONTRÔLE DES ÉLÉMENTS DE QUALITÉ, PARAMÈTRES OU GROUPES DE PARAMÈTRES POUR LE PROGRAMME DE SURVEILLANCE DES EAUX DE SURFACE De manière générale, la période à laquelle les contrôles sont effectués doit être déterminée de manière à réduire au maximum l'effet des variations saisonnières et/ ou des évènements hydrologiques particuliers sur les résultats. Les analyses des eaux, des sédiments et du biote nécessaires à la mise en œuvre et au suivi du programme de surveillance sont effectuées par des laboratoires agrées pour les éléments de qualité et paramètres analysés conformément aux dispositions prévues par l'article L. 212-2-2 du code de l'environnement. Les modalités d'agrément des laboratoires sont définies par l'arrêté du 27 octobre 2011 portant modalités d'agrément des laboratoires effectuant des analyses dans le domaine de l'eau et des milieux aquatiques au titre du code de l'environnement. Dans le cas où ces méthodes ne sont pas disponibles ou ne sont pas adaptées aux spécificités des milieux, notamment en outre-mer, le préfet coordonnateur de bassin fixe les méthodes à utiliser dans le bassin et les notifie à l'Office national de l'eau et des milieux aquatiques. Dans certains cas, le respect des objectifs de bon état et de non-dégradation des masses d'eau peut nécessiter la mise en œuvre de limites de quantification qui soient inférieures à celles mentionnées dans l'avis relatif aux limites de quantification des couples "paramètre-matrice" de l'agrément des laboratoires effectuant des analyses dans le domaine de l'eau et des milieux aquatiques. La fixation de LQ plus contraignantes pour la mise en œuvre de la surveillance est alors laissée à l'appréciation des bassins. 1. Description des outils, méthodes d'échantillonnage, de traitement et d'analyse des échantillons pour les cours d'eau 1.1. Eléments biologiques Les méthodes de mesure, de prélèvement et d'analyse à utiliser pour les contrôles des éléments biologiques sont celles indiquées ci-dessous. Les documents de référence technique indiqués peuvent être, selon les cas, des protocoles techniques, des normes expérimentales ou homologuées, des guides techniques. Certains de ces référentiels étant encore évolutifs, il conviendra d'utiliser les versions et documents d'application les plus à jour. Par exemple, les normes qui auront été publiées en remplacement de protocoles techniques, ainsi que les guides d'application (série GA de l'AFNOR) publiés en appui à l'application des normes. Pour les éléments biologiques, les fréquences de contrôle sont indiquées à l'annexe VI du présent arrêté. Pour assurer le suivi des opérations de surveillance comme pour permettre la mise en œuvre des prescriptions de démarche qualité, le lieu de chaque mesure hydrobiologique sera tracé avec précision. Les coordonnées géographiques précises des limites du "point de prélèvement" (au sens du dictionnaire SANDRE), exprimées dans le système Lambert 93, seront relevées lors de chaque mesure. Le point exact à considérer est celui précisé dans chaque protocole d'échantillonnage ou de relevé hydrobiologique. 1.1.1. Phytoplancton La définition du protocole est uniquement applicable en métropole et en Guyane. Cet élément de qualité biologique est jugé non pertinent pour les DOM insulaires. Méthode ou principes d'échantillonnage : -Protocole standardisé d'échantillonnage et de conservation du phytoplancton en grands cours d'eau applicable aux réseaux de mesure DCE, version 2, Cemagref, décembre 2010. Méthodes ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme européenne : NF EN 15204. Qualité de l'eau-Norme guide pour le dénombrement du phytoplancton par microscopie inversée (méthode Utermöhl) ; -l'application de cette norme doit suivre les prescriptions du détail opératoire précisées dans le chapitre "analyse du phytoplancton" du protocole standardisé en plan d'eau (cf. paragraphe 2.1.1.). 1.1.2. Phytobenthos : diatomées 1.1.2.1. Méthodes ou principes applicables en métropole Méthode ou principes d'échantillonnage, de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme française : NF T90-354. Qualité de l'eau-Détermination de l'Indice Biologique Diatomées (IBD). 1.1.2.2. Méthodes ou principes applicables en Guadeloupe et en Martinique Guide méthodologique de mise en œuvre des indices diatomique Antilles (IDA). A paraître en 2016. Dans l'attente de l'édition du guide méthodologique de mise en œuvre de l'IDA, hormis en ce qui concerne l'identification des taxons, les référentiels méthodologiques et les spécificités antillaises de mise en œuvre sont : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Norme française : NF T90-354. Qualité de l'eau-Détermination de l'Indice Biologique Diatomées (IBD) ; -Compte tenu des spécificités de l'environnement tropical insulaire et du peuplement diatomique des Antilles françaises, des adaptations du protocole d'échantillonnage sont nécessaires comme la nature du support et la surface à échantillonner (J. GUEGUEN, A. EULIN, E. LEFRANCOIS, S. BOUTRY, J. ROSEBERY, M. COSTE, F. DELMAS. Programme d'étude et de recherche 2009-2012. Mise au point d'un indice de bioindication de la qualité de l'eau des cours d'eau antillais à partir des diatomées : l'IDA. Rapport final-VF (12-03-2013). Irstea-Cemagref, Asconit Consultants). Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme française : NF T90-354. Qualité de l'eau-Détermination de l'Indice Biologique Diatomées (IBD). 1.1.2.3. Méthodes ou principes applicables à La Réunion Guide méthodologique de mise en œuvre de l'indice diatomique Réunion (IDR). A paraître en 2016. Dans l'attente de l'édition du guide méthodologique de mise en œuvre de l'IDR, hormis en ce qui concerne l'identification des taxons, les référentiels méthodologiques et les spécificités réunionnaises de mise en œuvre sont : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Norme française : NF T90-354. Qualité de l'eau-Détermination de l'Indice Biologique Diatomées (IBD) ; -Compte tenu des spécificités de l'environnement tropical insulaire et du peuplement diatomique de La Réunion, des adaptations du protocole d'échantillonnage sont nécessaires (S. BOUTRY, G. GASSIOLE, J. ROSEBERY, J. L. GIRAUDEL, F. PERES, M. COSTE, F. DELMAS. Mise au point d'un indice diatomique pour les cours d'eau de La Réunion (IDR) : Rapport final sur la démarche d'élaboration de l'indice (Version finale 10-10-2012). Irstea-Cemagref, Asconit Consultants, Université de Bordeaux. Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme française : NF T90-354. Qualité de l'eau-Détermination de l'Indice Biologique Diatomées (IBD). 1.1.2.4. Méthodes ou principes applicables à Mayotte Un indice de bioindication de la qualité de l'eau des cours d'eau mahorais à partir des diatomées est en cours de développement pour le troisième cycle. Dans l'attente de la livraison de cet indicateur et de son guide méthodologique de mise en œuvre, les méthodes à utiliser sont : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Norme française : NF T90-354. Qualité de l'eau-Détermination de l'Indice Biologique Diatomées (IBD) ; -Compte tenu des spécificités de l'environnement tropical insulaire et du peuplement diatomique de Mayotte, des adaptations du protocole d'échantillonnage sont nécessaires (nature du support, surface à échantillonner ...). Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme française : NF T90-354. Qualité de l'eau-Détermination de l'Indice Biologique Diatomées (IBD). 1.1.2.5. Méthodes ou principes applicables en Guyane Un indice de bioindication de la qualité de l'eau des cours d'eau guyanais à partir des diatomées est en cours de développement pour le troisième cycle DCE. Dans l'attente de la livraison de cet indicateur et de son guide méthodologique de mise en œuvre, les méthodes à utiliser sont : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Norme française : NF T90-354. Qualité de l'eau-Détermination de l'Indice Biologique Diatomées (IBD) ; -Compte tenu des spécificités de l'environnement tropical insulaire et du peuplement diatomique de Guyane, des adaptations du protocole d'échantillonnage sont nécessaires (nature du support, surface à échantillonner ...). Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme française : NF T90-354. Qualité de l'eau-Détermination de l'Indice Biologique Diatomées (IBD). 1.1.3. Macrophytes : angiospermes, bryophytes ptéridophytes et macro-algues La définition du protocole est uniquement applicable en métropole. Ces éléments de qualité biologique sont jugés non pertinents pour les DOM. Méthode ou principes d'échantillonnage, de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme française : NF T90-395. Qualité de l'eau-Détermination de l'indice biologique macrophytique en rivière (IBMR) ; -Guide méthodologique d'application de l'IBMR-AFNOR GA T90-495 (à paraître). 1.1.4. Faune benthique invertébrée 1.1.4.1. Méthodes ou principes applicables en métropole Cas des cours d'eau peu profonds : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Norme française : XP T90-333 (puis NF T90-333 dès son entrée en vigueur) : Prélèvement des macro-invertébrés aquatiques en rivières peu profondes. Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme française : XP T90-388 (puis NF T90-388 dès son entrée en vigueur) : Qualité de l'eau-Traitement au laboratoire d'échantillons contenant des macro-invertébrés de cours d'eau. Options 2, B et b, c ou d Cas des cours d'eau profonds : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Protocole expérimental d'échantillonnage "invertébrés" en grands cours d'eau, décembre 2009, université de Metz, Cemagref (ou version ultérieure ou norme ultérieure remplaçant ce protocole expérimental). Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme française : XP T90-388 (puis NF T90-388 dès son entrée en vigueur) : Qualité de l'eau-Traitement au laboratoire d'échantillons contenant des macro-invertébrés de cours d'eau. Cas des canaux : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Protocole expérimental d'échantillonnage "invertébrés" en grands cours d'eau, décembre 2009, université de Metz, Cemagref (ou version ultérieure ou norme ultérieure remplaçant ce protocole expérimental). Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme française : XP T90-388 (puis NF T90-388 dès son entrée en vigueur) : Qualité de l'eau-Traitement au laboratoire d'échantillons contenant des macro-invertébrés de cours d'eau. 1.1.4.2. Méthodes ou principes applicables en Guadeloupe et en Martinique Guide méthodologique de mise en œuvre de l'indice biologique Macroinvertébrés Antilles (IBMA). A paraître en 2016. Dans l'attente de l'édition du guide méthodologique de mise en œuvre de l'IBMA, hormis en ce qui concerne l'identification des taxons, les référentiels méthodologiques et les spécificités de mise en œuvre sont : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Norme française : XP T90-333 (puis NF T90-333 dès son entrée en vigueur) : Qualité écologique des milieux aquatiques. Qualité de l'eau. Prélèvement des macro-invertébrés aquatiques en rivières peu profondes. 2009 ; -Protocole à adapter en fonction des spécificités de l'environnement étudié (H. Touron-Poncet, C. Bernadet, N. Bargier, R. Céréghino. Programme d'étude 2010-2013. Mise au point d'un indice de bioindication de la qualité de l'eau à partir des macroinvertébrés benthiques commun à la Guadeloupe et à la Martinique. Rapport final 2013-V1 (07-06-2013). Université Paul Sabatier Toulouse III/ Ecolab UMR5245, Asconit Consultants. Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme XP T 90-388 (puis NF T90-388 dès son entrée en vigueur) : Qualité écologique des milieux aquatiques. Qualité de l'eau. Traitement au laboratoire d'échantillons contenant des macro-invertébrés de cours d'eau. 2010 ; -Protocole à adapter en fonction des spécificités des échantillons antillais (H. Touron-Poncet, C. Bernadet, N. Bargier, R. Céréghino. Programme d'étude 2010-2013. Mise au point d'un indice de bioindication de la qualité de l'eau à partir des macroinvertébrés benthiques commun à la Guadeloupe et à la Martinique. Rapport final 2013-V1 (07-06-2013). Université Paul Sabatier Toulouse III/ Ecolab UMR5245, Asconit Consultants. 1.1.4.3. Méthodes ou principes applicables à La Réunion Guide méthodologique de mise en œuvre de l'indice Macroinvertébrés Réunion (IRM). A paraître en 2016. Dans l'attente de l'édition du guide méthodologique de mise en œuvre de l'IBMA, hormis en ce qui concerne l'identification des taxons, les référentiels méthodologiques et les spécificités réunionnaises de mise en œuvre sont : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Norme française : XP T90-333 (puis NF T90-333 dès son entrée en vigueur) : Qualité écologique des milieux aquatiques. Qualité de l'eau. Prélèvement des macro-invertébrés aquatiques en rivières peu profondes. 2009 ; -Protocole à adapter en fonction des spécificités de l'environnement étudié, par exemple pour le cas des vallées orientales exposées directement aux typhons (Forcellini M., Grondin H., Mathieu C., Péru N., Richarson M., Sagnes P., Usseglio-Polatera P., Valade P., sous la direction de S. Mérigoux et J. M. Olivier, 2012. Conception d'indices de bio-évaluation de la qualité écologique des rivières de l'île de La Réunion à partir des poissons et des invertébrés benthiques. Rapport final.). Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme XP T 90-388 (puis NF T90-388 dès son entrée en vigueur) : Qualité écologique des milieux aquatiques. Qualité de l'eau. Traitement au laboratoire d'échantillons contenant des macro-invertébrés de cours d'eau. 2010 ; -Protocole à adapter en fonction des spécificités des échantillons réunionnais (Forcellini M., Grondin H., Mathieu C., Péru N., Richarson M., Sagnes P., Usseglio-Polatera P., Valade P., sous la direction de S. Mérigoux et J. M. Olivier, 2012. Conception d'indices de bio-évaluation de la qualité écologique des rivières de l'île de La Réunion à partir des poissons et des invertébrés benthiques. Rapport final). 1.1.4.4. Méthodes ou principes applicables à Mayotte Un indice de bioindication de la qualité de l'eau des cours d'eau de Mayotte à partir des macroinvertébrés benthiques est en cours de développement. Dans l'attente de la livraison de cet indicateur et de son guide méthodologique de mise en œuvre, les méthodes à utiliser sont : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Norme française : XP T90-333 (puis NF T90-333 dès son entrée en vigueur) : Qualité écologique des milieux aquatiques. Qualité de l'eau. Prélèvement des macro-invertébrés aquatiques en rivières peu profondes. 2009 ; -Protocole à adapter en fonction des spécificités de l'environnement étudié (en attente de l'édition du guide ONEMA). Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme XP T 90-388 (puis NF T90-388 dès son entrée en vigueur) : Qualité écologique des milieux aquatiques. Qualité de l'eau. Traitement au laboratoire d'échantillons contenant des macro-invertébrés de cours d'eau. 2010 ; -Protocole à adapter en fonction des spécificités des échantillons mahorais (en attente de l'édition du guide ONEMA). 1.1.4.5. Méthodes ou principes applicables en Guyane Guide méthodologique de mise en œuvre de l'indice Macroinvertébrés Guyane (SMEG). A paraître en 2016. Dans l'attente de l'édition du guide méthodologique de mise en œuvre du SMEG, hormis en ce qui concerne l'identification des taxons, les référentiels méthodologiques et les spécificités guyanaises de mise en œuvre sont : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Norme française : XP T90-333 (puis NF T90-333 dès son entrée en vigueur) : Qualité écologique des milieux aquatiques. Qualité de l'eau. Prélèvement des macro-invertébrés aquatiques en rivières peu profondes. 2009 ; -Protocole à adapter en fonction des spécificités de l'environnement guyanais, des taxons à échantillonner (en attente de l'édition du guide ONEMA). Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme XP T 90-388 (puis NF T90-388 dès son entrée en vigueur) : Qualité écologique des milieux aquatiques. Qualité de l'eau. Traitement au laboratoire d'échantillons contenant des macro-invertébrés de cours d'eau. 2010 ; -Protocole à adapter en fonction des spécificités des échantillons et des taxons guyanais (en attente de l'édition du guide ONEMA). 1.1.5. Ichtyofaune (et macro-crustacés pour les DOM insulaires) 1.1.5.1. Méthodes ou principes applicables en métropole Méthode ou principes d'échantillonnage : Partie échantillonnage de la norme XP T90-383 (puis NF T90-383 dès son entrée en vigueur) : échantillonnage des poissons à l'électricité dans le cadre des réseaux de suivi des peuplements de poissons en lien avec la qualité des cours d'eau ; en particulier les chapitres 4,6 et 7 de la norme. Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Niveau de détermination : espèce (réf. : Keith P., Persat H., Feunteun E., Allardi J. (coords), 2011. Les poissons d'eau douce de France. Biotope, Mèze ; Museum National d'Histoire Naturelle, Paris (collection Inventaires et biodiversité), 552 p.) ; -Biométrie-Partie analyse de la norme XP T90-383 (puis NF T90-383 dès son entrée en vigueur) : échantillonnage des poissons à l'électricité dans le cadre des réseaux de suivi des peuplements de poissons en lien avec la qualité des cours d'eau ; en particulier le chapitre 8.1 de la norme. 1.1.5.2. Méthodes ou principes applicables en Guadeloupe et Martinique Pour le cas où cet élément de qualité serait pertinent et dans l'attente de la définition d'un nouvel indice de bioindication de la qualité de l'eau propre aux cours d'eau antillais à partir des poissons et des macro-crustacés, les protocoles d'échantillonnage et d'analyse compatibles DCE de métropole seront à adapter au mieux aux cas antillais. Méthode ou principes d'échantillonnage recommandés : -Partie échantillonnage de la norme XP T90-383 (puis NF T90-383 dès son entrée en vigueur) : échantillonnage des poissons à l'électricité dans le cadre des réseaux de suivi des peuplements de poissons en lien avec la qualité des cours d'eau ; en particulier les chapitres 4,6 et 7 de la norme. Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Biométrie-Partie analyse de la norme XP T90-383 (puis NF T90-383 dès son entrée en vigueur) : échantillonnage des poissons à l'électricité dans le cadre des réseaux de suivi des peuplements de poissons en lien avec la qualité des cours d'eau ; en particulier le chapitre 8.1 de la norme. 1.1.5.3. Méthodes ou principes applicables à La Réunion Guide méthodologique de mise en œuvre de l'indice Réunion poissons (IRP). A paraître en 2016. Dans l'attente de l'édition du guide méthodologique de mise en œuvre de l'IRP, hormis en ce qui concerne l'identification des taxons, les référentiels méthodologiques et les spécificités réunionnaises de mise en œuvre sont : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Avant le plan d'échantillonnage, la sectorisation est définie suivant la méthode dite "par ambiances" ; -Partie échantillonnage de la norme XP T90-383 (puis NF T90-383 dès son entrée en vigueur) : échantillonnage des poissons à l'électricité dans le cadre des réseaux de suivi des peuplements de poissons en lien avec la qualité des cours d'eau ; en particulier les chapitres 4,6 et 7 de la norme. Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Biométrie-Partie analyse de la norme XP T90-383 (puis NF T90-383 dès son entrée en vigueur) : échantillonnage des poissons à l'électricité dans le cadre des réseaux de suivi des peuplements de poissons en lien avec la qualité des cours d'eau ; en particulier le chapitre 8.1 de la norme. -Niveau de détermination : espèce (réf. : Keith P., Vigneux E., Bosc P., 1999. Atlas des poissons de La Réunion. Edition MNHN, 136 p.). 1.1.5.4. Méthodes ou principes applicables à Mayotte Pour le cas où cet élément de qualité serait pertinent et dans l'attente de la définition d'un indice de bioindication de la qualité de l'eau propre aux cours d'eau mahorais à partir des poissons, les protocoles d'échantillonnage et d'analyse compatibles DCE de métropole seront à adapter au mieux au cas mahorais. Méthode ou principes d'échantillonnage : -Avant le plan d'échantillonnage, la sectorisation est définie suivant la méthode dite "par ambiances" ; -Partie échantillonnage de la norme XP T90-383 (puis NF T90-383 dès son entrée en vigueur) : échantillonnage des poissons à l'électricité dans le cadre des réseaux de suivi des peuplements de poissons en lien avec la qualité des cours d'eau ; en particulier les chapitres 4,6 et 7 de la norme. Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Biométrie-Partie analyse de la norme XP T90-383 (puis NF T90-383 dès son entrée en vigueur) : échantillonnage des poissons à l'électricité dans le cadre des réseaux de suivi des peuplements de poissons en lien avec la qualité des cours d'eau ; en particulier le chapitre 8.1 de la norme. -Niveau de détermination : espèce (réf. : Keith P., Marquet G., Valade P., Bosc P., Vigneux E. 2006. Atlas des poissons et des crustacés d'eau douce des Comores, Mascareignes et Seychelles. Muséum National d'Histoire Naturelle, Paris. Patrimoines naturels, 250 p.). 1.1.5.5. Méthodes ou principes applicables en Guyane (poissons uniquement) Guide méthodologique de mise en œuvre de l'indice poissons de Guyane (IPG). A paraître en 2016. Dans l'attente de l'édition du guide méthodologique de mise en œuvre de l'IPG, hormis en ce qui concerne l'identification des taxons, les référentiels méthodologiques et les spécificités Guyanaises de mise en œuvre sont : Méthode ou principes d'échantillonnage : -Méthode standardisée d'échantillonnage des poissons (Tejerina-Garro FL, Mérona B (de), 2000. Gill net sampling standardisation in large rivers of French Guiana (south america). Bull Fr Pêche Piscic 357/358 : 227-240 ; Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Biométrie : Tejerina-Garro FL, Mérona B (de), Oberdorff T, Hugueny B, 2006. A fish-based index of large river quality for French Guiana (South America) : Method and preliminary results. Aquat. Living Resour., 19 : 31-46. -Niveau de détermination : espèce (réf. : Planquette, P., Keith, P., Le Bail, P. Y.-1996-Atlas des poissons d'eau douce de Guyane. Tome 1. Collection du patrimoine naturelle, Paris, 429p./ Keith, P., Le Bail, P. Y., Planquette, P.-2000-Atlas des poissons d'eau douce de Guyane. Tome 2. Fascicule 1. Collection du patrimoine naturelle, Paris, 286p./ Le Bail, P. Y., Keith, P., Planquette, P.-2000-Atlas des poissons d'eau douce de Guyane. Tome 2. Fascicule 2. Collection du patrimoine naturelle, Paris, 307 p.) 1.2. Eléments physico-chimiques Ces paramètres sont applicables aux DOM (sauf ceux de la matrice sédiment pour La Réunion). Tableau 24.-Paramètres physico-chimiques pour les cours d'eau PARAMÈTRE physico-chimique cible CSP LIBELLÉ SANDRE DU PARAMÈTRE CSS LIBELLÉ SANDRE du support CSF LIBELLÉ SANDRE DE LA FRACTION CSU SYMBOLE SANDRE unité Groupe 1 (mesuré In situ) Température 1301 Température de l'Eau 3 Eau 23 Eau brute 27 ° C Oxygène dissous 1311 Oxygène dissous 3 Eau 23 Eau brute 175 mg (O2)/ L Saturation en O2 dissous 1312 Taux de saturation en oxygène 3 Eau 23 Eau brute 243 % pH 1302 Potentiel en Hydrogène (pH) 3 Eau 23 Eau brute 264 unité pH Conductivité 1303 Conductivité à 25° C 3 Eau 23 Eau brute 147 µS/ cm Groupe 2 (mesuré en laboratoire) DBO5 1313 Demande Biochimique en oxygène en 5 jours (D. B. O. 5) 3 Eau 23 Eau brute 175 mg (O2)/ L NKJ 1319 Azote Kjeldahl 3 Eau 23 Eau brute 168 mg (N)/ L P total 1350 Phosphore total 3 Eau 23 Eau brute 177 mg (P)/ L MEST 1305 Matières en suspension 3 Eau 23 Eau brute 162 mg/ L Turbidité* 1295 Turbidité Formazine Néphélométrique 3 Eau 23 Eau brute 232 NFU Chlorophylle a*** 1439 Chlorophylle a 3 Eau 23 Eau brute 133 µg/ L phéopigments*** 1436 Phéopigments 3 Eau 23 Eau brute 133 µg/ L DCO* 1314 Demande Chimique en Oxygène (D. C. O.) 3 Eau 23 Eau brute 175 mg (O2)/ L Groupe 2 bis (mesuré en laboratoire) NH4 + 1335 Ammonium 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 169 mg (NH4)/ L NO3- 1340 Nitrates 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 173 mg (NO3)/ L NO2- 1339 Nitrites 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 171 mg (NO2)/ L PO4 (3-) 1433 Orthophosphates (PO4) 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 176 mg (PO4)/ L COD 1841 Carbone Organique 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 163 mg (C)/ L Silice dissoute 1342 Silicates 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 273 mg (SiO2)/ L Groupe 3 (mesuré en laboratoire) Chlorures 1337 Chlorures 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 164 mg (Cl)/ L Sulfates 1338 Sulfates 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 179 mg (SO4)/ L Bicarbonates 1327 Hydrogénocarbonates 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 274 mg (HCO3)/ L Calcium 1374 Calcium 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 292 mg (Ca)/ L Magnésium 1372 Magnésium 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 320 mg (Mg)/ L Sodium 1375 Sodium 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 326 mg (Na)/ L Potassium 1367 Potassium 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 316 mg (K)/ L Dureté TH** 1345 Dureté totale 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 28 ° f TAC 1347 Titre alcalimétrique complet (T. A. C.) 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 28 ° f Groupe 4 (mesuré en laboratoire) Granulométrie*** 6228 Particule inférieures à 20 µm de sédiments 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 246 % poids sec Granulométrie*** 3054 Particule entre [20,63 [µm de sédiments 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 246 % poids sec Granulométrie*** 7042 Particule entre [63,150 [µm de sédiments 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 246 % poids sec Granulométrie*** 7043 Particule entre [150,200 [µm de sédiments 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 246 % poids sec Granulométrie*** 7044 Particule supérieures ou égales à 200 µm de sédiments 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 246 % poids sec Perte au feu*** 6578 Perte au feu à 550° C 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 246 % poids sec Carbone organique total*** 1841 Carbone Organique 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 160 mg/ (kg MS) Groupe 5 (mesuré en laboratoire) Aluminium*** 1370 Aluminium 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 160 mg/ (kg MS) Fer*** 1393 Fer 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 160 mg/ (kg MS) Manganèse*** 1394 Manganèse 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 160 mg/ (kg MS) Abréviations : CSP = Code SANDRE paramètre ; CSS = code SANDRE support ; CSF = code SANDRE fraction ; CSU = code SANDRE unité * : paramètres optionnels ** : paramètres calculés *** : paramètres non pertinent à La Réunion (insuffisance de la fraction fine du sédiment, forte variabilité temporelle de la granulométrie y compris en période d'étiage) Définition du groupe 6 : Substances de l'état chimique, polluants spécifiques de l'état écologique et substances pertinentes. Ces paramètres et groupes de paramètres sont mesurés en laboratoire. Pour les paramètres et groupes de paramètres pour lesquels la matrice pertinente est l'eau, la mesure est réalisée sur eau brute (non filtrée), à l'exception des métaux et métalloïdes et des perchlorates mesurés sur la fraction dissoute, obtenue par filtration de l'eau brute à travers un filtre de porosité 0,45 micromètres ou par tout autre traitement préliminaire équivalent. Période de prélèvement : -Sur support eau : Pour les groupes 1,2,2 bis et 3 : Fréquence par plan de gestion : tous les ans ; Période de prélèvement : toute l'année. Fréquence annuelle : Groupes 1,2 et 2 bis : 6 fois par an ; Groupe 3 : 2 fois par an. Groupe 6 : les fréquences de contrôle sont définies à l'annexe VI du présent arrêté -Sur support sédiment : Fréquence par plan de gestion : tous les trois ans ; Période de prélèvement : en dehors des périodes de hautes eaux. Fréquence annuelle : Groupe 4 et 5 : 1 fois par an. Groupe 6 : les fréquences de contrôle sont définies à l'annexe VI du présent arrêté. Pour l'application au cuivre, nickel et zinc des modèles de calcul de la fraction dissoute biodisponible de type BLM (Biotic Ligand Model) il est recommandé de réaliser la mesure du pH, du carbone organique dissous et de la concentration en calcium dissous, en même temps que la mesure de la concentration en métal dissous. Afin de permettre le calcul de la fraction dissoute biodisponible pour le plomb, il est recommandé de réaliser la mesure du carbone organique dissous, en même temps que la mesure de la concentration en plomb dissous. Méthode ou principes d'échantillonnage, de traitement et d'analyse des échantillons : Conformément au guide relatif à l'application de l'arrêté du 25 janvier 2010 modifié établissant le programme de surveillance de l'état des eaux, pour les eaux douces de surface (cours d'eau, canaux et plans d'eau). Dans l'attente de la publication du guide technique relatif à la mise en œuvre du programme de surveillance, la réalisation des mesures (échantillonnage, traitement des échantillons, transport et analyse) s'appuiera, dans la mesure du possible, sur le guide des recommandations techniques d'Aquaref dans sa version la plus récente. 1.3. Eléments hydromorphologiques La mise en œuvre du programme de surveillance pour les éléments de qualité hydromorphologiques nécessite des analyses à différentes échelles spatiales allant de la masse d'eau à la station. Le contrôle de surveillance et le contrôle opérationnel n'impliquent pas les mêmes échelles d'analyse (respectivement échelle du site d'évaluation et échelle de la masse d'eau). Ainsi, pour chaque élément de qualité sont prescrits ci-dessous les paramètres à suivre, les outils et méthodes de description ainsi que leur utilisation pour le Réseau de Contrôle de Surveillance (RCS). Pour le Contrôle Opérationnel (CO), les solutions méthodologiques adéquates sont à définir en fonction du (des) paramètre (s) hydromorphologique (s) pertinent (s). Trois éléments de qualité sont pris en compte pour l'hydromorphologie : -le régime hydrologique (quantité et dynamique du débit, connexion résultante aux eaux souterraines). Il s'agit également d'une composante majeure des conditions environnementales nécessaire à l'interprétation de la biologie ;-la continuité écologique. Il s'agit des dimensions longitudinale et latérale de l'hydrosystème. Elle traduit la migration des organismes aquatiques et la continuité sédimentaire (transferts des flux solides) ;-les conditions morphologiques (types de chenaux, variations de largeur et de profondeur, faciès et vitesses d'écoulement, état du substrat, état et structure des rives, zone riparienne). Pour les éléments hydromorphologiques, les fréquences de contrôle sont définies : -pour le RCS à l'annexe VI du présent arrêté ;-pour le CO à l'annexe X du présent arrêté. Ces éléments de qualité sont pertinents pour l'ensemble des types de masses d'eau sauf les canaux pour l'hydrologie. 1.3.1. Réseau de Contrôle de Surveillance 1.3.1.1. Régime hydrologique La surveillance peut être initiée en s'appuyant sur les méthodes et le référentiel de mesure des débits suivants : -Réseau de mesures national HYDRO ;-ONEMA-CEMAGREF, 2011. Contrôle des débits réglementaires-Application de l'article L. 214-8 du Code de l'Environnement. Guide technique Police de l'eau, 128 p. 1.3.1.2. Continuité écologique La surveillance peut être initiée en s'appuyant sur le référentiel des obstacles à l'écoulement (ROE) et le protocole d'informations sur la continuité écologique (ICE), qui porte sur la continuité piscicole à la montaison au niveau de chaque obstacle. Les méthodes standardisées de suivi et d'évaluation des aspects liées à la dévalaison des organismes vivants et à la continuité sédimentaire ne sont pas disponibles. Guides de référence : -ONEMA, 2014. Evaluer le franchissement des obstacles par les poissons. Principes et méthodes. Onema, 200 p.-ONEMA, 2014. Informations sur la Continuité Ecologique (ICE) : Protocole d'acquisition des données terrain. Onema,. 65 p.-ONEMA, 2014. Référentiel des Obstacles à l'Ecoulement : Guide d'administration et de gestion partenariale des données-SANDRE, 2012. Obstacles à l'écoulement, Dictionnaire de données, Présentation des données, 80 p.-SANDRE, 2012. Description des ouvrages faisant obstacle à l'écoulement, Dictionnaire de données, 128 p. 1.3.1.3. Conditions morphologiques Le protocole de CARactérisation de l'HYdromorphologie des Cours d'Eau (CARHYCE) est mis en œuvre. Ce protocole permet de mesurer les conditions morphologiques de la rivière à un débit donné et de donner une image descriptive de la station du réseau de contrôle de surveillance. Les paramètres pris en compte dans le protocole sont multiples : géométrie et largeur du lit, profondeur et débit, pente de la ligne d'eau, faciès d'écoulement, granulométrie, substrats organiques, colmatage, nature des matériaux constitutifs des berges et présence d'habitats caractéristiques, stratification, type et épaisseur de ripisylve, continuités longitudinale et latérale. Les contrôles sont réalisés en période proche des conditions d'étiage et obligatoirement en dehors de périodes d'événements extrêmes (étiages sévères et hautes eaux). A ce stade de développement du CARHYCE, le protocole ne s'applique que pour les cours d'eau prospectables à pied. Guide de référence : -ONEMA, 2014. CARHYCE : CARactérisation de l'HYdromorphologie des Cours d'Eau : Protocole de recueil de données hydromorphologiques à l'échelle de la station sur des cours d'eau prospectables à pied, version 2.0. Onema, 40 p. 1.3.2. Réseau de Contrôle Opérationnel Le contrôle opérationnel est établi après avoir identifié, pour l'état des lieux, les masses d'eau en RNAOE (Risque de Non Atteinte des Objectifs Environnementaux) et les pressions hydromorphologiques à l'origine de ce risque. Le contrôle opérationnel est mis en œuvre pour évaluer i). l'état de ces masses d'eau en RNAOE, ii). les changements d'état suite aux programmes de mesures. Le contrôle opérationnel se focalise sur le ou les éléments de qualité pertinent (s) en utilisant les méthodes et protocoles adaptés. 1.3.2.1. Régime hydrologique Le contrôle opérationnel peut être initié en s'appuyant sur les méthodes et le référentiel de mesure des débits : -Réseau de mesures national HYDRO ;-ONEMA-CEMAGREF, 2011. Contrôle des débits réglementaires-Application de l'article L. 214-8 du Code de l'Environnement. Guide technique Police de l'eau, 128 p. 1.3.2.2. Continuité écologique La surveillance peut être initiée en s'appuyant sur le référentiel des obstacles à l'écoulement (ROE) et le protocole d'informations sur la continuité écologique (ICE), qui porte sur la continuité piscicole à la montaison au niveau de chaque obstacle. Les méthodes standardisées de suivi et d'évaluation des aspects liées à la dévalaison des organismes vivants et à la continuité sédimentaire ne sont pas disponibles. Guides de référence : -ONEMA, 2014. Evaluer le franchissement des obstacles par les poissons. Principes et méthodes. Onema, 200 p.-ONEMA, 2014. Informations sur la Continuité Ecologique (ICE) : Protocole d'acquisition des données terrain. Onema,. 65 p.-ONEMA, 2014. Référentiel des Obstacles à l'Ecoulement : Guide d'administration et de gestion partenariale des données-SANDRE, 2012. Obstacles à l'écoulement, Dictionnaire de données, Présentation des données, 80 p.-SANDRE, 2012. Description des ouvrages faisant obstacle à l'écoulement, Dictionnaire de données, 128 p. 1.3.2.3. Conditions morphologiques Pour le suivi des conditions morphologiques à l'échelle de la masse d'eau, les paramètres les plus pertinents, selon l'avis d'expert, pourront ainsi être pris en compte, en retenant préférentiellement pour caractériser ces paramètres les protocoles des méthodes existantes telles que CARHYCE ou AURAH-CE. Dès lors que l'un de ces protocoles est mis en œuvre, il est recommandé de le réaliser dans son intégralité. Guides de référence (liste non exhaustive) : -ONEMA, 2014. CARHYCE : CARactérisation de l'HYdromorphologie des Cours d'Eau : Protocole de recueil de données hydromorphologiques à l'échelle de la station sur des cours d'eau prospectables à pied, version 2.0. Onema, 40 p.-ONEMA, 2013. Protocole d'AUdit RApide de l'Hydromorphologie des Cours d'Eau (AURAH-CE). Guide, 46 p. 2. Description des outils, méthodes d'échantillonnage, de traitement et d'analyse des échantillons pour les plans d'eau 2.1. Eléments biologiques Les méthodes de mesure, de prélèvement et d'analyse à utiliser pour les contrôles des éléments biologiques sont celles indiquées ci-dessous. Pour les éléments biologiques, les fréquences de contrôle sont indiquées à l'annexe VI du présent arrêté. 2.1.1. Phytoplancton Méthode ou principes d'échantillonnage, de traitement et d'analyse des échantillons : -Protocole standardisé d'échantillonnage, de conservation, d'observation et de dénombrement du phytoplancton en plan d'eau pour la mise en œuvre de la DCE, version 3.3 septembre 2009, CEMAGREF. 2.1.2. Macrophytes (angiospermes, macro-algues, bryophytes) Méthode ou principes d'échantillonnage : -Norme française : XP T 90-328 (puis NF T90-328 dès son entrée en vigueur). Echantillonnage des communautés de macrophytes en plans d'eau. Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme française : XP T 90-328 (puis NF T90-328 dès son entrée en vigueur). Echantillonnage des communautés de macrophytes en plans d'eau. 2.1.3. Faune benthique invertébrée Méthode ou principes d'échantillonnage, de traitement et d'analyse des échantillons : -Méthode en cours de développement, à paraître en 2016 (la méthode sera à appliquer pour le 2e cycle DCE). 2.1.4. Ichtyofaune Méthode ou principes d'échantillonnage : -Norme européenne : NF EN 14757 (01-11-2005)-T90-366. Qualité de l'eau-échantillonnage des poissons à l'aide de filets maillants. Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme européenne : NF EN 14757 (01-11-2005)-T90-366. Qualité de l'eau-échantillonnage des poissons à l'aide de filets maillants. 2.1.5. Diatomées Méthode ou principes d'échantillonnage : -IRSTEA, 2013. Echantillonnage des communautés de phytobenthos en plan d'eau, 8p (ou version ultérieure). Méthode ou principes de traitement et d'analyse des échantillons : -Norme française : NF T90-354. Qualité de l'eau-Détermination de l'Indice Biologique Diatomées (IBD). 2.1.6. Cas des départements d'outre mer En outre-mer, à ce stade des connaissances seule la méthodologie d'échantillonnage du phytoplancton est adaptée. Les autres méthodes ne sont pas nécessairement adaptées aux spécificités des milieux et la pertinence des différents éléments de qualité biologique reste à déterminer. L'ONEMA proposera (en lien avec le pôle ONEMA-IRSTEA d'hydro-écologie des plans d'eau) une méthodologie d'acquisition de données afin de pouvoir qualifier le bon état ou le bon potentiel à dire d'expert. 2.2. Eléments physico-chimiques Ces paramètres sont applicables aux DOM. Tableau 25.-Paramètres physico-chimiques pour les plans d'eau PARAMÈTRE physico-chimique cible CSP LIBELLÉ SANDRE DU PARAMÈTRE CSS LIBELLÉ SANDRE du support CSF LIBELLÉ SANDRE DE LA FRACTION CSU SYMBOLE SANDRE unité**** Groupe 1 (mesuré In situ) Transparence 1332 Limpidité-Disque de Secchi 3 Eau 23 Eau brute 13 cm Température 1301 Température de l'Eau 3 Eau 23 Eau brute 27 ° C Oxygène dissous 1311 Oxygène dissous 3 Eau 23 Eau brute 175 mg (O2)/ L Saturation en O2 dissous 1312 Taux de saturation en oxygène 3 Eau 23 Eau brute 243 % pH 1302 Potentiel en Hydrogène (pH) 3 Eau 23 Eau brute 264 unité pH Conductivité 1303 Conductivité à 25° C 3 Eau 23 Eau brute 147 µS/ cm Cote à l'échelle 1429 Cote à l'échelle lue au moment du prélèvement, ou de l'opération hydrométrique 3 Eau 23 Eau brute 111 m Matière Organique Dissoutes Fluorescentes 7615 Fluorescence des Matières Organiques Dissoutes aux UV-A 3 Eau 23 Eau brute 579 Ppb QSE Groupe 2 (mesuré en laboratoire) NKJ 1319 Azote Kjeldahl 3 Eau 23 Eau brute 168 mg (N)/ L P total 1350 Phosphore total 3 Eau 23 Eau brute 582 µg (P)/ L MEST 1305 Matières en suspension 3 Eau 23 Eau brute 162 mg/ L Turbidité 1295 Turbidité Formazine Néphélométrique 3 Eau 23 Eau brute 232 NFU Teneur en matière minérale 2835 Teneur en matière minérale 3 Eau 23 Eau brute 162 mg/ L Chlorophylle a 1439 Chlorophylle a 3 Eau 23 Eau brute 133 µg/ L phéopigments 1436 Phéopigments 3 Eau 23 Eau brute 133 µg/ L Groupe 2 bis (mesuré en laboratoire) NH4 + 1335 Ammonium 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 378 µg (NH4)/ L NO3- 1340 Nitrates 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 173 mg (NO3)/ L NO2- 1339 Nitrites 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 583 µg (NO2)/ L PO4 (3-) 1433 Orthophosphates (PO4) 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 379 µg (PO4)/ L COD 1841 Carbone Organique 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 163 mg (C)/ L Silice dissoute 1342 Silicates 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 273 mg (SiO2)/ L Groupe 3 (mesuré en laboratoire) Chlorures 1337 Chlorures 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 164 mg (Cl)/ L Sulfates 1338 Sulfates 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 179 mg (SO4)/ L Bicarbonates 1327 Hydrogénocarbonates 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 274 mg (HCO3)/ L Calcium 1374 Calcium 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 292 mg (Ca)/ L Magnésium 1372 Magnésium 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 320 mg (Mg)/ L Sodium 1375 Sodium 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 326 mg (Na)/ L Potassium 1367 Potassium 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 316 mg (K)/ L Dureté TH** 1345 Dureté totale 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 28 ° f TA*** 1346 Titre alcalimétrique (T. A.) 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 28 ° f TAC*** 1347 Titre alcalimétrique complet (T. A. C.) 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 28 ° f Aluminium 1370 Aluminium 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 278 µg (Al)/ L Fer 1393 Fer 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 307 µg (Fe)/ L Manganèse 1394 Manganèse 3 Eau 3 Phase aqueuse de l'eau (filtrée, centrifugée...) 321 µg (Mn)/ L Groupe 4 (mesuré en laboratoire) Carbone organique total 1841 Carbone Organique 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 160 mg/ (kg MS) NKJ 1319 Azote Kjeldahl 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 160 mg/ (kg MS) Phosphore total 1350 Phosphore total 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 160 mg/ (kg MS) Perte au feu 6578 Perte au feu à 550° C 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 245 % poids sec Granulométrie 6228 Particule inférieures à 20 µm de sédiments 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 246 % poids sec Granulométrie 3054 Particule entre [20,63 [µm de sédiments 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 246 % poids sec Granulométrie 7042 Particule entre [63,150 [µm de sédiments 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 246 % poids sec Granulométrie 7043 Particule entre [150,200 [µm de sédiments 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 246 % poids sec Granulométrie 7044 Particule supérieures ou égales à 200 µm de sédiments 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 246 % poids sec Groupe 4 bis (mesuré en laboratoire) PO4 (3-) 1433 Orthophosphates (PO4) 6 Sédiments 5 Eau interstitielle sédiments 379 µg (PO4)/ L Phosphore total 1350 Phosphore total 6 Sédiments 5 Eau interstitielle sédiments 582 µg (P)/ L NH4 + 1335 Ammonium 6 Sédiments 5 Eau interstitielle sédiments 378 µg (NH4)/ L Groupe 5 (mesuré en laboratoire) Aluminium 1370 Aluminium 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 160 mg/ (kg MS) Fer 1393 Fer 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 160 mg/ (kg MS) Manganèse 1394 Manganèse 6 Sédiments 32 Particule < 2 mm de sédiments 160 mg/ (kg MS) Abréviations : CSP = Code SANDRE paramètre ; CSS = code SANDRE support ; CSF = code SANDRE fraction ; CSU = code SANDRE unité * : paramètres optionnels ** : paramètres calculés *** : TAC (à privilégier) ou TA **** : Le "code SANDRE unité" indique l'unité dans laquelle doit être exprimée la mesure. Cette unité ne remet pas en cause la limite de quantification du paramètre fixée par avis en application de l'arrêté du 27 octobre 2011 portant modalités d'agrément des laboratoires effectuant des analyses dans le domaine de l'eau et des milieux aquatiques. Définition du groupe 6 : Substances de l'état chimique, polluants spécifiques de l'état écologique et substances pertinentes. Ces paramètres et groupes de paramètres sont mesurés en laboratoire. Pour les paramètres et groupes de paramètres pour lesquels la matrice pertinente est l'eau, la mesure est réalisée sur eau brute (non filtrée), à l'exception des métaux et métalloïdes et des perchlorates mesurés sur la fraction dissoute, obtenue par filtration de l'eau brute à travers un filtre de porosité 0,45 micromètres ou par tout autre traitement préliminaire équivalent. Fréquence d'analyse et période de prélèvement : Fréquence par plan de gestion : 1 fois (ou 2 fois dans les cas prévus au tableau 35 de l'annexe VI) ; Période de prélèvement : selon les paramètres-modalités de suivi à adapter pour les plans d'eau d'altitude. Groupes 1,2 et 2 bis : 4 fois par an, mêmes périodes que le phytoplancton. Groupe 3 : 1 fois par an (fin de période de mélange hivernal). Groupes 4,4 bis et 5 : 1 fois par an (de préférence, fin d'été). Groupe 6 : la fréquence de contrôle est indiquée à l'annexe VI du présent arrêté Dans la mesure du possible, les campagnes pour les paramètres des groupes 1 à 3 seront réalisées au jour (+/-1 ou 2 jours) du passage des satellites dont les dates seront communiquées pour chaque plan d'eau par le Pôle Onema-Irstea Plans d'Eau. Pour l'application au cuivre, nickel et zinc des modèles de calcul de la fraction dissoute biodisponible de type BLM (Biotic Ligand Model) il est recommandé de réaliser la mesure du pH, du carbone organique dissous et de la concentration en calcium dissous, en même temps que la mesure de la concentration en métal dissous. Afin de permettre le calcul de la fraction dissoute biodisponible pour le plomb, il est recommandé de réaliser la mesure du carbone organique dissous, en même temps que la mesure de la concentration en plomb dissous. Méthode ou principes d'échantillonnage, de traitement et d'analyse des échantillons : Conformément au guide relatif à l'application de l'arrêté du 25 janvier 2010 modifié établissant le programme de surveillance de l'état des eaux, pour les eaux douces de surface (cours d'eau, canaux et plans d'eau). Dans l'attente de la publication du guide technique relatif à la mise en œuvre du programme de surveillance, la réalisation des mesures (échantillonnage, traitement des échantillons, transport et analyse) s'appuiera, dans la mesure du possible, sur le guide des recommandations techniques d'Aquaref dans sa version la plus récente. 2.3. Eléments hydromorphologiques Pour chaque élément de qualité sont précisés ci-dessous les paramètres à suivre, les outils et méthodes de description. Pour les plans d'eau il n'est pas nécessaire de distinguer le Contrôle de Surveillance (RCS) du Contrôle Opérationnel (RCO). Deux éléments de qualité sont pris en compte : -le régime hydrologique (amplitude et dynamique du marnage, quantité et dynamique des débits entrant et sortant, temps de séjour, connexion avec les eaux souterraines) ; -les conditions morphologiques (état et structure des rives, variation de la profondeur du lac, état et structure du substrat). Pour les éléments hydromorphologiques, les fréquences de contrôle sont définies : -pour le RCS à l'annexe VI du présent arrêté ; -pour le CO à l'annexe X du présent arrêté. Pour les conditions morphologiques, un système d'analyse intégrant les échelles de fonctionnement hydromorphologique a été élaboré pour les plans d'eau. Ce système permet d'apprécier les pressions et les altérations des conditions morphologiques s'exerçant sur les plans d'eau : -à l'échelle du bassin versant (risque d'apport de sédiments fins par érosion des sols, risque de rupture de la continuité avec les tributaires, occupation des sols, infrastructures, imperméabilisation des sols et modifications des flux liquides ...) ; -à l'échelle du plan d'eau (artificialisation des rives, ripisylve, forme et profondeurs de la cuvette, structure et substrat du lit ...) ; -en prenant en compte la structure et l'aménagement des corridors qui l'entourent (urbanisation des corridors, fragmentation de la ripisylve, voies de communication dans les corridors...). L'emboîtement de différents outils permet de produire une expertise des altérations des éléments de qualité hydromorphologique fondée sur des paramètres robustes et homogènes au plan national. En outre, il permet également de replacer les altérations des conditions morphologiques observées au niveau du plan d'eau dans le contexte d'aménagement du bassin versant et d'en analyser les causes probables. Plus qu'une simple description c'est donc un système intégrant les échelles d'organisation des processus hydromorphologiques qui a été construit. Les conditions morphologiques sont déclinées en trois éléments : -la structure de la rive ; -la variation de la profondeur du lac ; -la quantité, la structure et le substrat du lit. Les descriptions de la structure et des aménagements des corridors, des berges, et des habitats des rives sont assurées par les protocoles ALBER (ALtérations des BERges), et CHARLI (Caractérisation des HAbitats (structure physique du lit) des Rives et du Littoral des plans d'eau). Les variations de formes et de profondeurs du plan d'eau sont décrites par une méthode standardisée de relevés bathymétriques (BATHYMETRIE). Les paramètres physiques relevés par ces protocoles permettent de caractériser chaque plan d'eau suivi et de mieux comprendre l'influence de l'hydromorphologie sur les résultats biologiques observés. Ces données seront combinées en différentes métriques hydromorphologiques qui permettront de quantifier le niveau d'altération physique par comparaison à des modèles de référence par type de plan d'eau. Ces indicateurs de qualité hydromorphologiques sont en cours de développement au sein du pôle Onema-Irstea d'Aix-en-Provence. Les protocoles développés et standardisés, à utiliser pour recueillir les données du contrôle de surveillance et du contrôle opérationnel concernant les conditions morphologiques des plans d'eau sont listés ci-dessous. Ces méthodes sont applicables aux DOM. Protocoles Terrain par les opérateurs de bassin et les DIR : ALBER = Protocole de terrain consacré à la caractérisation des ALtérations des BERges des plans d'eau. Les données doivent être fournies sous le format numérique SIG préconisé dans le protocole. Ce protocole est en cours de normalisation AFNOR en 2014. Guides de référence : Alleaume S., Baudoin J.-M., Heyd C., Lanoiselée C. et Argillier C., 2014. Protocole de caractérisation des Altérations des Berges-Alber. Projet de norme. Rapport intermédiaire, 17 p. Onema-Irstea, 2012. Protocole de caractérisation des Altérations des Berges. Rapport Pôle Onema-Irstea, (version 2012.2) Alleaume et al., 2010. ALBER : Protocole de caractérisation des ALtérations des BERges, 25 p. CHARLI = Protocole de terrain consacré à la Caractérisation des HAbitats (structure physique du lit) des Rives et du Littoral des plans d'eau. Ce protocole est en cours de normalisation AFNOR en 2014. Les données doivent être fournies sous le format numérique SIG préconisé dans le protocole. Guides de référence : Alleaume S., Baudoin J.-M., Heyd C., Lanoiselée C. et Argillier C., 2014. Protocole de Caractérisation des HAbitats des Rives et du Littoral-Charli. Projet de norme. Rapport intermédiaire, 22 p. Onema-Irstea, 2012. Charli : Protocole de Caractérisation des HAbitats des Rives et du Littoral. Rapport Pôle Onema-Irstea, version 2012.3. Alleaume et al., 2010. CHARLI : Protocole de Caractérisation des HAbitats des Rives et du Littoral. Rapport du pôle ONEMA/ CEMAGREF, 20 p. BATHYMETRIE = Protocole de terrain d'analyse bathymétrique de la forme et des variations de profondeur du plan d'eau. Les données doivent être fournies sous format numérique. La bathymétrie constitue une donnée initiale et doit être réactualisée dès lors que l'on se trouve dans des systèmes très évolutifs (facteurs naturels ou anthropiques). Guide de référence : Alleaume et al., 2010. Bathymétrie des plans d'eau. Protocole d'échantillonnage et descripteurs morphométriques. Rapport du pôle ONEMA/ CEMAGREF, 24 p. 3. Description des outils, méthodes d'échantillonnage, de traitement et d'analyse des échantillons pour les eaux littorales 3.1. Eléments biologiques Les méthodes de mesure, de prélèvement et d'analyse à utiliser pour les contrôles des éléments biologiques sont celles indiquées ci-dessous. Les fréquences de contrôle sont indiquées à l'annexe VI du présent arrêté. 3.1.1. Phytoplancton Protocole d'échantillonnage Localisation du prélèvement : le prélèvement est effectué en sub-surface (0-1m) et : -pour les eaux côtières de Manche et d'Atlantique, de préférence en dehors de la zone estran, à pleine mer plus ou moins deux heures ; -pour les eaux côtières de Méditerranée, de préférence dans la matinée ou en milieu de journée, et hors influence directe de sources de perturbation ; -pour les lagunes méditerranéennes, de préférence dans la matinée ou en milieu de journée et hors période de vent ; -pour les eaux de transition estuariennes, au centre du fleuve, à pleine mer plus ou moins deux heures. Mode de prélèvement et de conservation : eau brute prélevée à d'une bouteille de prélèvement de type Niskin (Daniel, 2009). Méthode d'analyse Les paramètres mesurés sont la biomasse (chlorophylle a), l'abondance (phytoplancton total) et la composition taxinomique. La concentration en chlorophylle-a peut être déterminée après filtration et extraction à l'aide de 3 techniques : -la méthode spectrophotométrique (Aminot et Kérouel, 2004), -la méthode fluorimétrique (Aminot et Kérouel, 2004) -la méthode chromatographique (van Heukelem and Thomas, 2001 ; Wright et al., 1991 ; Zapata et al., 2000) Les résultats sont exprimés en microgramme par litre d'eau brute. Dans l'état d'avancement technologique actuel, les mesures de chlorophylle a obtenues à l'aide de capteurs de fluorescence in vivo sont des mesures semi-quantitatives qui ne peuvent pas être interprétées avec la même grille de lecture que les mesures réalisées au laboratoire avec les méthodes décrites ci-dessus. Par contre, dans la mesure où l'équivalence des résultats a été démontrée, il est possible d'utiliser les images satellites pour l'évaluation de la chlorophylle a en masse d'eau côtière. L'abondance consiste à compter les cellules de picoplancton et de nanoplancton (Sieburth et al., 1978) par cytométrie de flux. Les résultats sont exprimés en nombre de cellules par litre d'eau brute. L'identification et le dénombrement des cellules phytoplanctoniques sont effectués sous microscope inversé selon la méthode d'Uthermöhl (1958). Les procédures sont décrites dans la norme NF EN 15204. L'identification se fait au plus précis, espèce ou genre si possible, sinon à un niveau taxonomique supérieur (famille, voire classe). Les résultats sont exprimés en nombre de cellules par litre d'eau brute. Références : Aminot A. et Kérouel R. (2004). Hydrologie des écosystèmes marins-Paramètres et analyses. Ed. Ifremer, 336p. Daniel A. (2009). Techniques de prélèvement hydrologique en milieu marin (HYPERLINK " http :// envlit. ifremer. fr/ var/ envlit/ storage/ documents/ dossiers/ prelevementhydro/ presentation. html " http :// envlit. ifremer. fr/ var/ envlit/ storage/ documents/ dossiers/ prelevementhydro/ presentation. html) Norme NF EN 15204 (2006). Qualité de l'eau-Norme guide pour le dénombrement du phytoplancton par microscopie inversée (méthode Utermöhl). 39 pages. Miossec L. (2013) Guide méthodologique des méthodes DCE en hydrobiologie littorale. Rapport AQUAREF 2013,32 p. Sieburth, J., Smetacek, V., Lenz, J. (1978). Pelagic ecosystem structure : heterotrophic compartments of the plankton and their relationship to plankton size fractions. Limnol. Oceanogr. 23 : 1256-1263. Uthermöhl H. (1958). Zur vervolkommnung der quantitativen phytoplankton methodik. Mit. tint. ver theor. angew. Limnol. 9 : 1-38. Van Heukelem L., Thomas C (2001). Computer-assisted high-performance liquid chromatography method development with applications to the isolation and analysis of phytoplankton pigments. Journal of chromatography A, 910,31-49. Wright, S. W., Jeffrey, S. W., Mantoura R. F. C., Lewellyn C. A., Bjornland T., Repeta D., Welschmeyer N. A. (1991). Improved HPLC method for the analysis of chlorophylls and carotenoids from marine phytoplankton. Marine Ecology Progress Series 77 : 183-196. Zapata, M, Rodríguez, F., Garrido J., (2000). Separation of chlorophylls and carotenoids from marine phytoplankton : a new HPLC method using a reversed phase C8 column and pyridine-containing mobile phases. Marine Ecology Progress Series 195 : 29-45. 3.1.2. Macro-algues (eaux côtières-façade Méditerranée) Protocole d'échantillonnage Concerne les substrats durs en mésolittoral et limite supérieur de l'infralittoral. Observations et relevés à partir d'un zodiac, positionné à 3 m du bord ; période d'observation Mai-Juin. Méthode d'analyse Géomorphologie et présence/ absence et abondance des communautés littorales notées directement sur carte ou photos aériennes sur le linéaire côtier découpé en unités de 50m de long. Références Laurence Miossec-Guide méthodologique des méthodes DCE en hydrobiologie littorale-CARLIT, macrophytes en lagunes et posidonies-Rapport AQUAREF 2014-13 p (sous presse) (nb de pages). Thibaut T., Mannoni PA. 2007. Cartographie des paysages marins : encorbellements à Lithophyllum et faciès à cystoseires Site Natura 2000 FR 9301624-Cap Lardier-Cap …